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MLO-Y4 MLOY4 (小鼠骨樣細胞)操作步驟

在完成MLO-Y4細胞的復蘇和傳代后，接下來的實驗操作需嚴格遵循無菌原則，以確保細胞的穩定性和實驗結果的可靠性。

1. 細胞接種與培養：

將傳代后的MLO-Y4細胞以適當密度（通常為5×10? cells/cm2）接種于預涂膠原的培養皿中，加入含10%胎牛血清（FBS）和1%α-MEM培養基，置于37℃、5% CO?的培養箱中靜置培養。每隔48小時更換新鮮培養基，避免代謝廢物積累影響細胞狀態。

2. 細胞形態觀察：

MLO-Y4細胞在健康狀態下呈星形或多突觸狀，若發現細胞變圓或脫落增多，可能提示培養條件異常（如pH失衡或污染）。此時需及時調整培養基或重新檢測無菌環境。

3. 實驗干預處理：

根據研究目的，可對細胞施加力學刺激（如流體剪切力）、化學誘導或基因轉染。例如，在研究成骨分化時，可添加50 μg/mL抗壞血酸，連續培養14天后通過堿性磷酸酶（ALP）染色評估分化效果。

4. 數據收集與分析：

通過CCK-8檢測增殖活性，或采用qPCR、Western blot檢測成骨相關基因（如Runx2、OCN）的表達。若需觀察細胞間通訊，可進行鈣成像或縫隙連接功能實驗。

注意事項：

- 膠原包被能顯著增強細胞貼壁率，建議提前24小時以0.1 mg/mL膠原溶液處理培養皿。

- 避免頻繁晃動培養瓶，以防細胞突觸損傷。

- 凍存時使用含10% DMSO的凍存液，程序降溫后轉入液氮長期保存。

通過上述步驟，可確保MLO-Y4細胞在實驗中保持最佳狀態，為骨代謝機制研究提供可靠模型。后續實驗可進一步結合共培養體系或體內移植，拓展其在骨組織工程中的應用。